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http://dspace.univ-relizane.dz/home/handle/123456789/744| Titre: | Isolement et caractérisation phenotypiques des souches bactériennes à partir la saline d'oued djemaa |
| Autre(s) titre(s): | Spécialité - Microbiologie et contrôle de qualité |
| Auteur(s): | Etudiant: BENBEKHTI Radia Amel, Etudiant: SOUAFI Fatima Zohra Etudiant: BENDELLA Ikhlas, Prof. MELIANI Meriem Fethia |
| Mots-clés: | Sebkha d’Oued El Djemâa, bactéries, isolement, analyses physico-chimiques, enzymes, biotechnologie |
| Date de publication: | 1-jui-2025 |
| Editeur: | Département des Sciences Biologiques |
| Collection/Numéro: | Microbiologie et contrôle de qualité;Mem 2025/19 |
| Résumé: | Dans le cadre de l’étude de la diversité bactérienne dans des environnements aux Caractéristiques inhabituelles, une étude microbiologique a été menée sur la sebkha d’Oued El Djemâa, située dans la wilaya de Relizane, afin d’identifier les différentes espèces bactériennes présentes et de caractériser leurs propriétés. Des échantillons de sol et d’eau ont été prélevés à partir du site, suivis de l’isolement des souches bactériennes. Les souches isolées ont ensuite été soumises à une série d’analyses physico-chimiques et de tests enzymatiques. Les résultats ont permis l’isolement de 21 souches bactériennes présentant des caractéristiques physico-chimiques variées. Certaines d’entre elles ont montré une capacité à produire des enzymes d’intérêt biotechnologique, ce qui met en valeur leur potentiel dans divers domaines d’application. |
| Description: | Introduction générale 1 Etude bibliographique Les Zones humides et les bactéries extrémo-tolérantes 4 1. Les zones humides 4 1.1. Définition des zones humides 4 1.2. Généralité sur les environnements salins et hyper_salins 5 1.3. Diversité des environnements salins 5 1.3.1. Environnements thalossohalins 5 1.3.2. Environnements atalassohalins 6 1.4. Les zones humides salines 7 1.4.1 Les lacs salés 7 1.4.2. Sebkha 7 2. La diversité bactérienne des environnements extremes 9 2.1. Les bactéries extremotolérantes 9 2.1.1. Généralités 9 2.1.2. Propriétés 9 2.1.3. Classification des bactéries extremotolérantes 10 - Les Bactéries thermotolérantes 10 - Les Bactéries psychrotolérantes 10 - Les Bactéries halotolérantes 11 - Bactéries acidotolérantes 12 - Les Bactéries alcalotolérantes 12 2.2. Application biotechnologique des bactéries extrémotolérantes 13 Identification des bactéries extrémotolérantes 1. Critères morphologiques 16 1.1. Observation macromorpholoqique 16 1.2. Observation microscopique après coloration de gram 16 2. Identification chimique 16 2.1. La galerie Api 20 16 2.2. La catalase 16 2.3. L’oxydase 17 2.4. Mannitol mobilité 17 2.5. Pigment mélanoide 17 3. Identification physique 17 3.1. La tolérance au pH 17 3.2. La tolérance a la tempéraure 17 3.3. La tolérance a la salinité 18 4. Identification enzymatiques des bactéries extrémotolérantes 18 4.1. Caséinase 18 4.2. Gélatinase 18 4.3. Tween 80 (Lipase / Estérase) 19 4.4. Hydrolyse de l’amidon 19 4.5. Uréase 19 4.6. Pectinase 20 4.7. Chitinase 20 ETUDE PRATIQUE Matériels et méthodes 1. Site de prélèvement de l’échantillon 23 1.1. Méthode de prélèvement 24 2. Prétraitement des échantillons 24 2.1. Cas du sédiment 24 2.2. Cas de l’eau 24 3. Isolement et purification des souches 25 3 .1.Technique d’isolement et conditions d’incubation 25 3.2. Purification des souches 25 4. Identification des souches 26 4 .1. Etude des caractères morphologiques 26 4.1.1. Etude macromorphologique 26 4.1.2...Etude micromorphologique 26 État frais 26 Coloration de Gram 26 5. identification biochimiques 26 5.1. Identification par galerie Api 20 26 5.2. La recherche de catalase 27 5.3. La recherche de l’oxydase 27 5.4. Mannitol mobilité 27 5.5. Recherche de pigment melanoide 27 6. Identification physique 27 6.1. La tolérance a la température 27 6.2. La tolérance au pH 27 6.3. La salinité 27 7. Etude des caractères enzymatiques 27 7.1. Recherche des protéases 27 7.1.1. Mise en évidence de l’activité caséinolytique 27 7.1.2. Mise en évidence de l’activité gélatinolytique 28 7.2. Recherche des lipases 29 7.2.1. Mise en évidence de l’activité lipolytique (Tween 80) 29 7.3. Recherche des sucres 29 7. 3.1. Mise en évidence de l’activité amylolytiques 29 7.4. Mise en évidence de l’activité uréolytique 29 7.5. Mise en évidence de l’activité pectinolytique 29 7.6. Mise en évidence de l’activité chitinolytique 30 Résultats et discussions 1. Caractèrisation phénotypique 32 1.1. Influence de milieu de culture sur la diversité des souches isolées à partir de la sebkha d’Oued Djemaa 32 1.2. Purification 32 1.3. Identification macromorphologique 34 1.4. Identification micromorphologique 36 1.5. Identification biochimique 41 1.5.1. Identification par galerie Api 20E 41 1.5.2. La recherche de la catalase 43 1.5.3. La recherche d’oxydase 44 1.5.4. Mannitol mobilité 45 1.5.5. Pigment mélanoide 46 1.6. Identification physiologique 47 1.6.1. Effet de la température sur la croissance des isolats 48 1.6.2. Effet de pH 49 1.6.3. La salinité 51 1.7. La mise en évidence des activités enzymatiques 52 1.7.1. Recherche des protéines 53 1.7.1.1. Dégradation de la caséine 53 1.7.1.2. Dégradation de la gélatine 54 1.7.2. Recherche des lipides 55 1.7.2.1. Dégradation du tween 80 55 1.7.3. Recherche des sucres 56 1.7.3.1. Dégradation de l’amidon 56 1.7.4. Dégradation des autres subtrats 58 1.7.4.1. Dégradation de l’urée 58 1.7.4.2. Dégradation de la pectine 59 1.7.4.3. Dégradation de la chitine 59 Conclusion et perspectives Références bibliographique Annexes |
| URI/URL: | http://dspace.univ-relizane.dz/home/handle/123456789/744 |
| Collection(s) : | Mémoires Master et Thèses Doctorants (SNV) |
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