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Titre: Coproscopie des selles poulets dans la wilaya de Relizane
Auteur(s): Etudiants: Abderrahmane Meriem, Prof. Nabti Ismahane Ben Yamina HaLima
Mots-clés: تربية الدواجن; الطفيليات الهضمية; الفحص البرازي الطفيلي; الكوكسيديا; النيماتودا; السيستودا; ولاية غليزان; التشخيص الطفيلي; الوقاية الصحية ; Élevage avicole; parasites digestifs; coproscopie; coccidies; nématodes; cestodes; wilaya de Relizane; diagnostic parasitologique; prévention sanitaire ; Poultry farming; intestinal parasites; coproscopy; coccidia; nematodes; cestodes; Relizane province; parasitological diagnosis; health prevention.
Date de publication: 1-jui-2026
Editeur: Département des Sciences Biologiques
Référence bibliographique: Spécialité Parasitologie
Collection/Numéro: 17/2026;
Résumé: الملخص تحتلّ تربية الدجاج مكانة مهمة في الإنتاج الحيواني، إلا أنها تتأثر في كثير من الأحيان بالعديد من الطفيليات الهضمية المسؤولة عن خسائر اقتصادية وصحية. يُعدّ الفحص البرازي الطفيلي (Coproscopie) وسيلة أساسية لتشخيص هذه الإصابات الطفيلية من خلال تحليل عينات البراز والبحث عن البيوض، الأكياس البيضية (Oocystes) ، والأكياس الطفيلية . (Kystes) يهدف هذا العمل إلى دراسة الطفيليات الهضمية لدى الدجاج في ولاية غليزان بالاعتماد على الفحوصات البرازية الطفيلية. وقد أظهرت النتائج المتحصل عليها وجود أنواع مختلفة من الطفيليات، لاسيما الكوكسيديا، IX والديدان الأسطوانية )النيماتودا(، وبعض الديدان الشريطية )السيستودا(. تبرز هذه الدراسة أهمية التشخيص البرازي الطفيلي في المراقبة الصحية لتربية الدواجن والوقاية من الأمراض الطفيلية Résumé L’élevage des poulets occupe une place importante dans la production animale, mais il est souvent affecté par plusieurs parasites digestifs responsables de pertes économiques et sanitaires. La coproscopie constitue une méthode essentielle pour diagnostiquer ces parasitoses à travers l’analyse des selles et la recherche des oeufs, oocystes et kystes parasitaires. Ce travail a pour objectif l’étude des parasites digestifs chez les poulets dans la wilaya de Relizane par des examens coproscopiques. Les résultats obtenus ont révélé la présence de différents parasites, notamment les coccidies, les nématodes et certains cestodes. Cette étude souligne l’importance du diagnostic coproscopique dans la surveillance sanitaire des élevages avicoles et la prévention des maladies parasitaires. Abstract Chicken farming plays a significant role in animal production, but it is frequently affected by several intestinal parasites that cause economic and health losses. Coproscopy is an essential method for diagnosing these parasitic infections through fecal analysis and the detection of parasitic eggs, oocysts, and cysts. This study aimed to investigate intestinal parasites in chickens in the Relizane province using coproscopy. The results revealed the presence of various parasites, including coccidia, nematodes, and certain cestodes. This study highlights the importance of coproscopy diagnosis in the health monitoring of poultry farms and the prevention of parasitic diseases.
Description: Tableau des matières IV Remerciement …………………………………………………………………………………I Dédicace ………………………………………………………………………………………II Résume………………………………………………………………………………………VII Liste des figures……………………………………………………………………………….X Introduction ........................1 Chapitre 01 : Généralités sur l’aviculture 1. Généralités sur l’aviculture : 2 1.1 Aperçu général sur le poulet :........... 2 1.1.1 Systématique : ...... 2 1.1.2 Morphologie et biologie : ......... 3 1.1.3 Tube digestif du poulet : ........... 3 -Les étapes de digestion : . 4 1.2 Mode d’aviculture en Algérie : ............... 5 1.2.1 L'aviculture traditionnelle : ...... 5 1.2.2 L’aviculture moderne : ......... 6 Chapitre 02 : Principaux parasites digestifs du poulet 1. Principaux parasites digestifs du poulet ... 7 1.1 Le parasitisme digestif chez les poulets : ............... 7 1.2 Les protozoaires : 7 1.2.1 La coccidiose : ...... 7 V 1.2.1.1 Morphologie des coccidies de poulet : ....... 8 A-L’oocyste : ...............8 B-Trophozoïte : .....10 C- Caractéristiques générales des espèces d’Eimeria chez la poule : .......................... 10 1.2.1.2 Cycle de vie des coccidies : .... 10 1.2.2 La cryptosporidiose aviaire : .. 11 1.2.2.1 Morphologie du parasite :....... 12 1.2.2.2 Signe de parasite :................... 12 1.3 Les métazoaires : ........ 12 1.3.1 Les helminthes :.. 13 1.3.1.1 Nématodoses : .... 13 -A- L’ascaridioses : ....... 13 -Morphologie : ...........14 -Cycle de vie :............15 1.3.1.2 Les cestodes :...... 16 A-Genre Davainea : ..16 B-Genre Raillietina : .17 1.3.1.3 Les trématodes :.. 17 - A-Famille des Echinostomatidae : .... 17 Chapitre 03 : Principales techniques de diagnostic coproscopique 1. Principales techniques de diagnostic coproscopique 18 1.1 Définition d’examen parasitologique des selles (EPS) : ........... 18 1.2 Examens directs :........ 18 1.2.1 Examen macroscopique :........ 18 1.2.2 Examen microscopique direct : ................ 18 VI A-État frais : ..........18 B- Techniques de coloration : ................. 19 1- Coloration de Lugol : . 19 2- Bleu de méthylène :........ 19 1.3 Méthodes microscopiques de concentration des parasites : .. 19 Principe générale : .....19 1.3.1 Les méthodes physiques : ....... 20 1.3.1.1 Technique par sédimentation : 20 A-Sédimentation simple multiple :......... 20 B-Sédimentation-centrifugation : ........... 20 C-Sédimentation en eau glycérinée (technique de Faust -Ingallas) : 20 1.3.1.2 Technique de flottation : ......... 21 A-Technique de Willis Pertinence : ........ 21 B-Technique de Faust simplifiée : .......... 21 C-Technique de Janeckso-Urbanyl : ....... 21 1.3.2 Les méthodes physico-chimiques ou méthodes diphasiques : ......................... 22 A-Technique de Bailenger : 22 -La technique : ...........23 B-Technique de Telemann Rivas : .......... 23 C-Technique de Ritchie simplifiée (éther-formol) : . 24 1.3.3 Les méthodes mixtes : ............ 25 1.3.3.1 Technique de Junod modifiée : ................. 25 1.3.3.2 Technique spéciale : ............... 25 A-Scotch-test anal : ...25 B-Méthode de Baermann : . 26 C-Coproculture des helminthes : ............ 27 -Culture sur charbon en boîte de pétri : .. 27 -Culture sur papier buvard en boîte de pétri : ........... 27 VII -Culture sur papier buvard en tube à essai : ............. 27 D-Recherche d’oocystes de cryptosporidies : .......... 27 -Technique de Ziehl-Neelsen modifiée par Henriksen et Pohlenz : ............................. 27 1.3.3.3 Technique de numération des oeufs d’helminthes : ........... 28 1-Technique de Kato-Katz : ............... 28 2-Technique de Mc-master : ................... 29 Partie pratique Partie pratique................34 Matériel et méthodes .....35 1. Objectif de travail : 35 2. Zone d’étude : (Figure 17)................. 35 3. Choix de la zone d’étude : .................. 36 4. Échantillonnage : ...36 5. Conservation des fèces : . 37 6. Matériel et Réactifs : ...... 37 6.1 Matériel : .......37 6.2 Réactifs : ........38 7. Techniques de coproparasitologie : .... 38 7.1 Examen macroscopique :............ 39 7.2 Examen microscopique : ............ 39 7.2.1 Examen microscopique direct : ................ 39 •Examen à l'état frais : (Figure 19) ..... 39 7.2.2 Examen microscopique direct après coloration : .......... 40 •Coloration au Lugol : (Figure 20) ..... 40 •Coloration au bleu méthylène : ......... 41 7.2.3 Technique de Flottation : (Figure 21) ....... 41 VIII •Méthode de Willis : ..41 •Méthode de Faust simplifiée : ............... 42 7.2.4 Technique de sédimentation sans centrifugation : ............. 43 7.2.5 Technique de sédimentation avec centrifugation : (Figure 23) ........................ 43 7.2.6 Technique de Ritchie simplifiée (éther–formol) : ............. 44 8. Lecture : (Figure 25)....... 45 9. Résultats : ..............46 9.1 Résultats d’échantillonnage :...... 46 9.2 Résultats de l’examen parasitologique ......... 47 10. Interprétation .....50 11. Discussion : .......52 12. Conclusion : ...........54
URI/URL: http://dspace.univ-relizane.dz/home/handle/123456789/1029
ISSN: 2025/2026
Collection(s) :Mémoires Master et Thèses Doctorants (SNV)

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