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Titre: Potentiel de Lemna minor dans le traitement des eaux salines et évaluation de son activité antiparasitaire
Auteur(s): Etudiants: BELGHERBI Meriem, Prof. GADI Omar BELHADADJI Safia
Mots-clés: المياه المالحة; المعالجة النباتية; إزالة الملوحة البيولوجية; النشاط المضاد ; Lemna minor Paramecium; للطفيلياتLemna minor; saline water; phytoremediation; biological desalination; antiparasitic activity; Paramecium; Lemna minor; eaux salines; phytoremédiation; dessalement biologique; activité antiparasitaire; Paramecium
Date de publication: 1-jui-2026
Editeur: Département des Sciences Biologiques
Référence bibliographique: Spécialité Parasitologie
Collection/Numéro: ;11/206
Résumé: Résumé Face à la dégradation croissante de la qualité des ressources hydriques et à l'émergence de nouvelles menaces parasitaires, la valorisation des macrophytes aquatiques représente une voie de recherche prometteuse et économiquement viable. La présente étude vise à évaluer le potentiel de Lemna minor dans le traitement des eaux salines et à explorer son activité antiparasitaire in vitro. La tolérance au sel a été étudiée dans des milieux de culture préparés à des concentrations croissantes de NaCl (1 g/L, 2 g/L, 3 g/L, 4 g/L, 6 g/L, 8 g/L, et enfin 35 g/L), en comparaison avec le milieu de référence de Steinberg. Les principaux paramètres physicochimiques mesurés tout au long des 14 jours d'expérimentation incluaient la biomasse, le pH, la salinité, ainsi que les concentrations en ions chlorure, nitrate et sulfate. L'activité antiparasitaire de l'extrait aqueux a été évaluée sur Paramecium à des concentrations allant de 0 à 830 μg/ml, avec confirmation microscopique des effets observés. Les résultats ont révélé que la croissance de Lemna minor est inversement proportionnelle à la concentration saline, avec une biomasse maximale de 45,1 mg enregistrée dans le milieu de Steinberg à J14, et une inhibition totale à 35 g.L⁻¹. Un taux de dessalement atteignant 24,27% a été obtenu dans le milieu à faible salinité, accompagné d'une réduction significative des ions chlorure (67%), nitrate (77%) et sulfate (48%). L'extrait aqueux a démontré une activité antiparasitaire concentration-dépendante, avec une CI₅₀ estimée entre 280 et 300 μg/ml et un effet létal total à 332 μg/ml, confirmé par des altérations morphologiques sévères observées au microscope. Abstract Given the increasing deterioration of water resource quality and the emergence of new parasitic threats, the use of aquatic macrophytes in biological treatment represent a promising and economically viable research avenue. This study aims to evaluate the potential of Lemna minor in saline water treatment and to explore its antiparasitic activity in vitro. Salt tolerance was investigated in culture media prepared at increasing NaCl concentrations (1 g/L, 2 g/L, 3 g/L, 4 g/L, 6 g/L, 8 g/L, and finally 35 g/L), compared to the Steinberg reference medium. The main physicochemical parameters monitored throughout the 14-day experiment included biomass, pH, salinity, and the concentrations of chloride, nitrate, and sulfate ions. The antiparasitic activity of the aqueous extract was assessed against Paramecium at concentrations ranging from 0 to 830 μg/ml, with microscopic confirmation of the observed effects. Results revealed that Lemna minor growth is inversely proportional to salt concentration, with a maximum biomass of 45.1 mg recorded in the Steinberg medium at day 14, and complete growth inhibition at 35 g.L⁻¹. A desalination rate of 24.27% was achieved in the low-salinity medium, accompanied by a significant reduction in chloride (67%), nitrate (77%), and sulfate (48%) ions. The aqueous extract demonstrated a concentration-dependent antiparasitic activity, with an estimated IC₅₀ between 280 and 300 μg/ml and a total lethal effect at 332 μg/ml, confirmed by severe morphological alterations observed under the microscope. الملخص في ظل التدهور المتصاعد لجودة الموارد المائية وبروز تهديدات طفيلية متجددة، يكتسب توظيف النباتات المائية في في معالجة المياه Lemna minor المعالجة البيولوجية أهميةة بحثيةة وعمليةة بالغة. تهدف هذه الدراسة إلى تقييم إمكانية المالحة واستكشاف نشاطها المضاد للطفيليات في المختبر. جرى دراسة تح د مل النبتة للملوحة في أوساط زراعية م معددة بتراكيز متصاعدة من كلوريد الصوديوم ( 1غرام/لتر، 2 غرام/لتر، 3 غرام/لتر، 4 غرام/لتر، 6 غرام/لتر، 8 غرام/لتر، المرجعي. وشملت المعاملت الفيزيوكيميائية الرئيسية ال م متاببعة على Steinberg وأخي ة را 35 غرام/لتر )، مقارنةة بوسط امتداد 14 يوماة: الكتلة الحيوية، والس الهيدروجيني، والملوحة، وتراكيز أيونات الكلوريد والنترات والكبريتات. كما مُييدم بتراكيز تتراوح بين 0 و 830 ميكروغرام/مل، مع تأكيد Paramecium النشاط المضاد للطفيليات للمستخلصالمائي على يتناسب عكسياة مع تركيز الملح، بكتلة حيوية صُوى Lemna minor مجهري للتأثيرات ال م مل ب حظة. كشفت النتائج أن نمو وبلغ معدل إزالة الملوحة .¹⁻ في اليوم الرابع عشر، وتو فُ كلي للنمو عند 35 غ.ل Steinberg بلغت 45.1 مغ في وسط (% %24.27 في الوسط منخفض الملوحة، رفقة تراجع معتبر في تراكيز أيونات الكلوريد ( 67 %) والنترات ( 77 تتراوح بين 280 CI₅₀ والكبريتات ( 48 %). وأثبت المستخلص المائي نشاطاة مضاداة للطفيليات يتناسب مع التركيز، ب و 300 ميكروغرام/مل وتأثير مميت كلي عند 332 ميكروغرام/مل، أ د كدته تغيرات شكلية حادة م رصدت تحت المجهر.
Description: Remerciements .2 Dedicace ..3 Table des matieres .................. Liste des figures ...................... 10 Liste des tableaux ................... 11 Liste des abréviations.............12 Introduction ...........13 Chapitre I : Lemna minor ...............4 1.1. Historique ........................ 5 1.2. Définition 5 1.3. Origine des noms ............. 6 1.4. Systématiques de la plante . ..........6 1.5. Description de l'espèce .... 7 1.5.1. Caractéristiques morphologiques ..............7 1.5.2. Espèces ressemblantes ......... 8 1.6. Répartition et écologie .....9 1.6.1. Distribution géographique .. 9 1.6.2. Biotope ......................9 1.7. Biologie de lemna minor ............ 10 1.7.1. Reproduction - multiplication ..................10 1.7.2. Facteurs influençant la croissance ...............11 1.8. Composition et nutrition .......... 13 1.8.1. Composition...........13 1.8.2. Nutrition .................13 1.9. Rôles et applications .... 13 1.9.1. Capacité de bioaccumulation des contaminants .............. 13 1.9.2. Contribution de Lemna minor à l’épuration des eaux usées .... 14 1.9.3. Activité antileishmanienne 15 Chapitre II : Généralités sur le dessalement des eaux .................... 17 2.1. Historiques ....................... 18 2.2. Problème de la rareté de l’eau .18 2.3. Définition du dessalement de l'eau de mer ... 19 2.4. Classification des eaux selon la salinité ..........19 2.5. Différents types d’eau ..20 2.5.1. Eau douce ...............20 2.5.2. Eau saumâtre .........21 2.5.3. Eau de mer .............21 2.6. Les principales technologies de dessalement des eaux .......... 22 2.6.1. Les procédés thermiques (La distillation) 23 2.6.2. Les procédés membranaires .....................24 2.7. Dessalement en Algérie 25 2.8. Définition du bio-dessalement de l’eau de mer ....................... 25 2.9. Mécanismes de bio-dessalement biologique dans la nature ...26 2.9.1. Système de transport dans la membrane cellulaire des organismes vivants ... 27 2.9.2. Mécanismes de bio-dessalement des bactéries ..................27 2.9.3. Mécanismes de bio-dessalement des plantes .....................28 2.9.4. Mécanismes de bio-dessalement chez les animaux ...........28 Chapitre III : Matériels et Méthodes .............. 30 3.1. Matériel biologique : Lemna minor L. ........... 31 3.2. Milieu de culture et nutriments ...................... 32 3.2.1 Milieu Steinberg (Modified Steinberg Medium) .............. 32 3.3. Dispositif de culture et essais de bio-dessalement ...................33 3.4. Mesure de la biomasse et suivi de la croissance de Lemna minor ...35 3.4.1. Détermination de la masse fraîche (Masse humide) ........ 35 3.4.2. Détermination de la masse sèche finale ...35 3.5. Mesure du pH ...............36 3.6. Mesure de la salinité .... 36 3.7. Détermination de chlorure .......36 3.8. Détermination de Nitrate selon APHA .......... 37 3.9. Détermination de Sulfate (SO4) ......................38 3.10. Évaluation de l'activité antiparasitaire in vitro .....................39 3.10.1. Préparation de l'extrait végétal de Lemna minor ...........39 3.10.2. Isolement, purification et choix du modèle biologique (Paramecium sp.) ......39 3.11. Analyse statistique ..... 41 Chapitre IV : Résultats et Discussion ............43 4.1. Effet de la salinité sur la croissance de Lemna minor .............44 4.2. Variation du pH ........... 46 4.3 Salinité .. 47 4.3. Chlorure (Cl¯) ..........50 4.4. Nitrate (NO3¯) .......... 51 4.5. Sulfate (SO42-) .............. 53 4.6. L’activité antiparasitaire ..........55 Conclusion ......59 References bibliographiques . 62 Annexes .62
URI/URL: http://dspace.univ-relizane.dz/home/handle/123456789/1023
ISSN: 2025/2026
Collection(s) :Mémoires Master et Thèses Doctorants (SNV)



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