L’utilisation de la PCR pour l’identification des parasites intestinaux

Etudiant: BELAOUEDJ Kheira, Etudiant: CHAIB Benhenni; Prof. Sebaa sarra

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dc.contributor.author	Etudiant: BELAOUEDJ Kheira, Etudiant: CHAIB Benhenni	-
dc.contributor.author	Prof. Sebaa sarra	-
dc.date.accessioned	2025-07-20T12:13:35Z	-
dc.date.available	2025-07-20T12:13:35Z	-
dc.date.issued	2025-06-01	-
dc.identifier.other	2024/2025	-
dc.identifier.uri	http://dspace.univ-relizane.dz/home/handle/123456789/737	-
dc.description	Table des matières Liste des figures Liste des tableaux Liste des abréviations INTRODUCTION ……….. 01 Chapitre 01 ……….. 04 Parasites Intestinaux chez l'Homme ……….. 04 Définition ……….. 05 Classification des Parasites Intestinaux ……….. 05 I. LES PROTOZOOSES INTESTINALES LES PLUS FREQUENTES ……….. 06 I.1. Giardiase - Giardia lamblia- (G. intestinalis) ……….. 06 I.1.1. Morphologie du parasite : ……….. 06 I.1.1.2. Cycle évolutif de Giardia intestinalis ……….. 07 I.1.1.3. Symptômes ……….. 08 I.1.1.4. Épidémiologie ……….. 08 I.1.1.5. Mode de transmission ……….. 09 I.2. Amibiase - Entamoeba histolytica Ŕ ……….. 09 I.2.1. Morphologie du parasite ……….. 09 I.2.2.Cycle évolutif d’Entamoeba histolytica ……….. 10 I.2.3. Symptômes ……….. 10 I.2.4. Epidémiologie ……….. 11 I.2.5. Mode de transmission ……….. 11 II. LES HELMINTHIASES INTESTINALES LES PLUS FREQUENTES ……….. 12 II.1. Cestodes ……….. 12 II.1.1. Téniasis -Tænia solium- ……….. 12 II.1.1.2 Morphologie parasitaire : ……….. 12 II.1.1.3. Cycles évolutifs : Tænia solium ……….. 13 II.1.1.4. Symptômes ……….. 14 II.1.1.5. Épidémiologie : ……….. 14 II.1.1.6. Mode de transmission : ……….. 15 II.2. Nématodes ……….. 15 II.2.1. Ascardiose - Ascaris lumbricoïdes ……….. 15 II.2.1.1. Morphologie parasitaire ……….. 15 II.2.1.2. Le cycle parasitaire ……….. 16 II.2.1.3. Symptômes de l'infection par Ascaris ……….. 17 II.2.1.4. Épidémiologie ……….. 18 II.2.1.5. Mode de transmission ……….. 18 Chapitre 02 ……….. 19 Techniques de Diagnostic des Parasites Intestinaux ……….. 19 I.1. Diagnostic clinique : ……….. 20 I.2. Diagnostic parasitologique et conférence par examen parasitologie spécifique des selles ……….. 21 I.2.1. Examen macroscopique ……….. 21 II. Examen microscopique ……….. 21 II.1. Examen microscopique direct sans concentration ……….. 21 II.2. Examen microscopique après concentration ……….. 22 III. Techniques de diagnostic moléculaire ……….. 22 III.1. Polymérase Chain Réaction ( PCR ) ……….. 23 III.1.1. Principe de la PCR ……….. 23 III.1.2. Les étapes de la PCR ……….. 24 III.1.3.Avantages et limites de la PCR ……….. 27 III.1.4. Exemples de parasites identifiables par PCR. ……….. 29 III.1.4.1. Giardia lamblia ( Giardia intestinalis). ……….. 29 III.1.4.2. Entamoeba histolytica ……….. 29 III.1.4.3. Taenia spp. (Ténias ) ……….. 29 III.1.4.4. Ascaris lombricoïdes ……….. 29 Partie Expérimentale ……….. 30 Chapitre 03 ……….. 31 matériel et méthodes ……….. 31 I-Sélection des échantillons ……….. 32 II- Fonctionnement général du test NovoDiag® Stool Parasite ……….. 32 III- Protocole d’analyse NOVODIAG® Stool Parasite ……….. 33 IV- PCR simplex routine ……….. 34 Chapitre 04 ……….. 35 Résultats ……….. 36 Discussion ……….. 39 Conclusion ……….. 43 Références bibliographiques ……….. 44 Annexe ……….. 49	en_US
dc.description.abstract	Ce mémoire est un travail de synthèse qui vise à comparer les performances du kit NovoDiag® Stool Parasite (PCR multiplex) avec d'autres méthodes de diagnostic existantes, telles que l'examen microscopique direct et les PCR simplex de routine, afin de déterminer sa sensibilité et sa spécificité pour détecter divers parasites intestinaux, notamment Giardia intestinalis, Entamoeba histolytica, Ascaris lumbricoides et Taenia saginata. Certains laboratoires au niveau internationale utilisent la PCR multiplex : NovoDiag® Stool Parasite pour diagnostiquer la présence des parasites. Cette méthode regroupe un large panel de 26 cibles différentes correspondant à 30 pathogènes intestinaux, protozoaires et helminthes. La cohorte étudiée comporte 36 échantillons de selles, 26 appartenant au groupe test et 10 témoins négatifs, issus de donneurs de greffe fécale. Le groupe test a été sélectionné d’après les résultats de l’examen parasitologique des selles positif (examen direct au microscope et/ou PCR routine) . En dépit d’une cohorte restreinte, le kit NovoDiag® Stool parasite a montré une bonne sensibilité (100%) pour les pathogènes suivants : Ascaris lumbricoides, Taenia saginata et une bonne sensibilité pour Giardia intestinalis (87.5%). Concernant Entamoeba histolytica les résultats sont très décevants. Ce travail a montré les avantages et les limites de l'utilisation de la PCR dans le diagnostic des parasitoses intestinales, en mettant en lumière les résultats prometteurs pour certains pathogènes et les éventuelles lacunes pour d'autres.	en_US
dc.language.iso	fr	en_US
dc.publisher	Département des Sciences Biologiques	en_US
dc.relation.ispartofseries	Parasitologie;Mem 2025/12	-
dc.subject	protozoaires, helminthes, NovoDiag® Stool Parasite, PCR multiplex examen parasitologique de selles	en_US
dc.title	L’utilisation de la PCR pour l’identification des parasites intestinaux	en_US
dc.title.alternative	Spécialité - Prasitologie	en_US
dc.type	Thesis	en_US
Appears in Collections:	Mémoires Master et Thèses Doctorants (SNV)

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